螯虾神经轴突上双微电极细胞内刺激与记录及其实验观察

本文以螯虾细小神经轴突为标本,成功地应用双玻璃微电极进行细胞内刺激与电活动的记录。观察了细小神经轴突膜电生理和物理特性参数。钾离子通道特异性阻滞剂4—氨基吡啶,使Weiss式中常数b值显著减少;a值无明显变化;膜静息电位去极化;阈电位水平上移;动作电位幅值、锋电位时程、膜电阻和膜时间常数均有显著意义的增加。结果提示:4—氨基吡啶可提高膜的应激性,对神经膜兴奋性无明显影响;生物膜应激性及膜电阻的变化与钾通道的活动状态有密切关系。     

用两只微电极在螯虾同一神经纤维内进行刺激和记录方法

本文介绍了一种用两只微电极在螫虾同一神经纤维内进行刺激和记录的方法。     

膜离子通道阻断剂对神经兴奋性及兴奋性指标的影响

本研究以蟾蜍坐骨神经-腓神经和螯虾腹大神经为材料,观察了膜离子通道阻断剂对神经兴奋性及兴奋性指标的影响。结果显示:标准电量α与膜钠离子通道的开放数量及通道的激活速率有关,是正确反映兴奋性的指标。b 反映了膜钠、钾离子通道活动的动态平衡过程和应激活动过程.Chr 与膜离子通道的活动无直接联系。     

进一步分析Weiss式并批判时值的初步结果

<正> 本研究旨在用实验证实基强度(Rh)与b之间数量差别的存在并探讨由该差别引起的一系列问题。实验在60条离体蟾蜍坐骨神经上进行。用动作电位作指标常规测定i.t.c。用BASIC语言在计算机上处理数据。文中tH表     

标准电量a在临床上的应用——进一步批判时值

兴奋性是活组织的最基本特性之一,反映兴奋性的指标一直比较混乱。Lapicque提出的时值(τ)曾流行一时,至今还有一定的影响,但在实际上多用i·t·c而不专靠τ。后来,作者之一侯提出了Ti、a和It。最近,侯作了进一步分析,主张用标准电量(a)来作为兴奋性指标。我们用单个方波电刺激测痛法,测定了20例临床病人的τ、i·t·c和a。从对测试结果的分析比较中,得出:τ不能正确反映兴奋性的变化,因而τ不能作为兴奋性指标;i·t·c的移动一般较为正确反映兴奋性变化的方向;去掉b后的i·t·c才能正确反映兴奋性及其变化,而a是从数量上反映去掉b后i·t·c的变化,并且测定较为简便。因此,我们推荐a在临床上广泛使用。     

一个正确反映兴奋性的时间因素的指标

一、绪言生理学者们都承认时紧张曲线以及根据它所导出的Hoorweg Weiss的经验式,是最能代表兴奋性及其变化的。但它在实际应用上太复杂,也就必须从这个曲线上找出一个到两个常数来代表这个曲线的移动,而正确反映兴奋性的变化。 Lapicque(1926)认为兴奋性的定义应该从两方面来考虑。用强度基表示刺激强度所决定的「强度」兴奋性;用时值表示刺激持续时间所决定的「时间」兴奋性(1930)。时值在生理学上在临床电气诊断学上得到广泛的应用与支持。但还有许多人根据实验,怀疑了它是否可以正确地反应     

顶盖前区前核痛觉调制作用的形态学探讨──HRP束路追踪和免疫细胞化学研究

应用ＨＲＰ束路追踪和免疫细胞化学技术研究了顶盖前区前核（ＡＰｔＮ）和中脑深部网状核（ＤｐＭｅ）之间的纤维联系以及ＡＰｔＮ内几种神经活性物质的分布。将ＨＲＰ注入ＤｐＭｅ后，发现在ＡＰｔＮ内有ＨＲＰ标记的神经元胞体和纤维终末，表明ＡＰｔＶ和ＤｐＭｅ之间存在着双向纤维联系。ＡＰｔＮ内的ＨＲＰ标记细胞呈背、腹两群的极性分布模式。背侧群标记细胞偏向ＡＰｔＮ吻段分布，其中有相当一部分ＨＲＰ标记细胞也是谷氨酸（Ｇｌｕ）阳性细胞，提示ＡＰｔＮ内的这群细胞向ＤｐＭｅ的投射纤维终末以释放Ｇｌｕ为主。ＡＰｔＮ内的ＨＲＰ标记纤维主要位于ＡＰｔＮ尾段的背外侧和腹侧，提示由ＤｐＭｅ到ＡＰｔＮ的传入纤维可能通过ＡＰｔＮ的背外侧和腹侧两条通路进入ＡＰｔＮ。免疫细胞化学染色显示，ＡＰｔＮ含有Ｇｌｕ、亮－脑啡肽（Ｌ－ＥＮＫ）、Ｐ物质（ＳＰ）、酪氨酸羟化酶（ＴＨ）和５－羟色胺（５－ＨＴ）免疫反应阳性胞体和／或纤维，但没有发现加压素（ＶＰ）和β－内啡肽（β－ＥＮＤ）阳性反应结构。上述阳性反应物质在ＡＰｔＮ内各有自己的分布模式，但并不以哪种活性物质为主，提示ＡＰｔＮ功能的多样性和复杂性。     

细胞内记录动作电位测定蛙单根有髓神经纤维强度—时间关系

本文介绍了一种简单的细胞内记录蛙有髓神经纤维动作电位方法。将该方法用于测定神经纤维阈刺激的强度-时间关系,所得结果能够满足一般科研及教学工作的需要。     

膜离子通道闸门调制剂对神经兴奋性的影响

在38例螯虾腹大神经和60例蟾蜍坐骨神经-腓神经标本上,观察了乌头碱(AC)、钙离子(Ca~(2+))和脱氧胆汁酸(DOC)3种膜离子通道闸门调制剂对神经兴奋性以及兴奋性指标—标准电量(a)的影响。结果表明,a与钠通道的激活速率有关,它可能反映了打开钠通道活化闸门、产生动作电位所需要的电量变化。